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07 de Enero, 2011    microbilogia lactea

microbiologia de la leche

Índice                                                                             

Introducción

Prácticas

Análisis de alimentos y aguas

Microbiota aerobia mesófila

Enterobacterias totales

Hongos y levaduras

Microorganismos psicrótrofos

Recuento e identificación de coliformes totales y fecales

Recuento e identificación de Salmonella

Detección de Staphylococcus aureus en portadores sanos

Elaboración de Alimentos

La levadura como agente espónjate de la masa panaria

Elaboración de alimentos por fermentación ácido-láctica: Yogurt

Temporalización

 


INTRODUCCIÓN

 

Los alimentos, al igual que el agua, no son, en general, productos estériles. En el caso del agua, sobre todo en el caso del agua potable, además de presentar una baja carga microbiana, determinadas especies microbianas deben estar ausentes. En el caso de los alimentos, la carga microbiana varía dependiendo del tipo de alimento.

La calidad microbiológica del agua y de los productos alimentarios hace referencia a dos aspectos fundamentales: la calidad higiénico-sanitaria y la calidad comercial. La primera tiene una gran importancia debido a que su ausencia conlleva un considerable riesgo para la salud del consumidor, ya que tanto el agua como los alimentos pueden ser vehículos de microorganismos patógenos. Respecto a la segunda, cabe señalar que hay microorganismos que aunque carezcan de significado sanitario, pueden ser causa de la alteración del agua o alimento, modificando el color, aroma, sabor, consistencia o aspecto.

 

TIPOS DE MICROORGANISMOS

Los análisis microbiológicos de aguas y alimentos, están destinados a la búsqueda de agentes infecciosos o toxigénicos o de indicadores de una contaminación no admisible, de modo que se asegure la calidad higiénico-sanitaria de los mismos. Aunque los microorganismos más importantes en cuanto a la salud pública son aquellos que desarrollan patologías, tales como Salmonella, Staphylococcus aureus, Psedomonas aeruginosa, etc., existe un grupo de microorganismos de especial relevancia higiénico-sanitaria, los llamados "indicadores". Estos microorganismos no son necesariamente patógenos, y su presencia se relaciona con la existencia de contaminación, avisando de la posible existencia de patógenos y otros microorganismos que pueden alterar el producto. Estos microorganismos "indicadores" se analizan de forma rutinaria, y de hecho, en la legislación se considera su análisis como un parámetro de calidad microbiológica. 

El interés de la determinación de estos grupos “indicadores” se centra en la biodiversidad que los diferentes hábitats pueden presentar. Cada entorno se caracteriza por albergar determinadas asociaciones microbianas, entre las que se pueden incluir especies patógenas. Dichas especies no siempre resultan detectables de forma sencilla, por lo que en numerosas ocasiones se determinan de forma indirecta a través de otras especies o grupos pertenecientes a la misma asociación.

 

ESQUEMA GENERAL:

Los puntos básicos a desarrollar en el análisis microbiológico de un alimento o de agua son los siguientes:

 

 Toma de la muestra y transporte al laboratorio: Las técnicas microbiológicas son inadecuadas para determinar la calidad microbiológica de un alimento a menos que se aplique un programa de muestreo adecuado. La forma más exacta de conocer la calidad del alimento sería el análisis de su totalidad. Esto es inviable y por ello se hace necesario analizar unidades de muestra (muestras representativas), efectuándose su elección de forma aleatoria. Generalmente se acude al uso de tablas de número aleatorios que permiten efectuar un muestreo de forma imparcial y contrastada. La obtención y manipulación correcta de las muestras son factores clave a tener en cuenta en un muestreo. Los recipientes de recogida deben ser estériles, así como los utensilios que se utilizan en dicho proceso. El transporte hasta el laboratorio ha ser rápido y deben utilizarse neveras para conservar el alimento. Todas las muestras deben procesarse lo más rápido posible a su llegada al laboratorio y siempre debe trabajarse en las adecuadas condiciones de asepsia.

 Procesado de la muestra: En el análisis de la calidad microbiológica de un alimento, interesa obtener información representativa acerca de la microbiota presente en el conjunto del alimento, lo que puede ser especialmente problemático cuándo este es sólido. Es por lo tanto necesario homogeneizar el alimento para poder realizar un análisis representativo de la integridad.

 Siembra y aislamiento en medios de cultivo: Se realiza para poder estudiar los microorganismos presentes en la muestra. En este paso se pretende que los microorganismos que se encuentren en la muestra crezcan en un sustrato elaborado en el laboratorio. Esto va a facilitar el estudio de dichos microorganismos, entre otras cosas por permitir su aislamiento, es decir, la separación de las distintas especies presentes en la muestra.

 Identificación o recuento de los microorganismos observados: Este paso dependerá del objetivo del análisis. Si estamos interesados en comprobar la ausencia o presencia de un determinado microorganismo, se realiza una identificación. Si se pretende conocer la carga microbiana general o de un determinado grupo bacteriano, se realiza un recuento que en ocasiones puede ir seguido de una identificación.

 

En el caso de estar interesados en conocer la presencia de determinados grupos de microorganismos, o más concretamente. la de algún género o especie bacteriana, se harán, además, una serie de pruebas destinadas a su identificación. Estas pruebas suelen estar englobadas en dos grandes grupos que son lo que se llaman pruebas de observación y pruebas bioquímicas. Dentro de las primeras se incluiría el estudio de características macro y micro morfológicas. En el segundo grupo se encontrarían una serie de pruebas bioquímicas que se realizan para comprobar la capacidad de metabolización de determinados compuestos o la capacidad de producir determinados metabolitos. (Inmunológicas, composición, ADN, etc.).

 

 


PRÁCTICAS

 
MUESTREOS Y MANIPULACION DE MUESTRAS ALIMENTARIAS

El tratamiento a aplicar al alimento una vez en el laboratorio dependerá de sus características. En esta práctica veremos una técnica de tratamiento general, útil para la mayoría de los alimentos. Sin embargo, algunos alimentos necesitan un tratamiento específico. Es el caso de, las muestras congeladas, que deben adecuarse a las condiciones ambientales en frío, a una temperatura controlada que evite o dificulte la multiplicación de los microorganismos presentes en la misma e induzcan a sobrevalorar los recuentos de microorganismos en la muestra en origen. Tanto las muestras sólidas como líquidas deben ser homogeneizadas, labor que se lleva a cabo en un "stomacher".

 

HOMOGENEIZACION DE MUESTRAS

 

Material

¥ Bolsas estériles.

¥ Balanza.

¥ Matraz con 90ml de caldo nutritivo.

¥ Stomacher.

¥ Espátulas estériles.

 

Procedimiento:

¥ Pesar 10 g del alimento e introducir en bolsas estériles.

¥ Adicionar los 90 ml de caldo nutritivo estéril a las bolsas con alimento.

¥ Introducir en stomacher y homogeneizar durante unos 30".

¥ La suspensión obtenida se puede volver a pasar al matraz estéril (donde originalmente se localizaba el caldo nutritivo) para su mejor manejo. Esta suspensión se utilizará para realizar todos los análisis a la muestra.

 

1.- MICROORGANISMOS AEROBIOS MESOFILOS

La cuantificación de este grupo microbiano permite estimar de forma general la carga microbiana presente en una muestra, si bien no aporta datos concretos sobre el tipo de especies predominantes. No obstante, su conocimiento siempre es interesante, ya que su valor es reflejo de la calidad sanitaria y, adicionalmente, suele proporcionar información con respecto a la existencia de prácticas incorrectas, tales como vertidos o manipulación inadecuada. Sin embargo, los datos derivados del recuento de la microbiota aerobia mesófila no deben ser considerados como parámetros absolutos en cuanto a su valor indicador, ya que un resultado elevado no ha de ir necesariamente unido a la presencia de microorganismos patógenos o toxinas ni, por el contrario, un bajo recuento en el número de colonias de estas características se relaciona siempre con la ausencia de microbiota patógena.

            Por tanto, y considerando las reservas anteriormente comentadas, es necesario siempre determinar la cantidad de microorganismos aerobios mesófilos y extraer las conclusiones adecuadas de dicha información, sin que ello signifique obviar otros análisis de mayor especificidad y valía.

 

 

INVESTIGACION DE MICROORGANISMOS AEROBIOS MESOFILOS EN ALIMENTOS

 

Recuento por siembra en agar a sobrefusión.

 

Material

¥ Tubos de ensayo 16x160mm con solución salina.

¥ Pipetas estériles de 1ml.

¥ Estufa de cultivo.

¥ Placas petri.

¥ Tubos con Agar PCA (Platee Count Agar) a sobrefusión.

 

Procedimiento:

Detección y Recuento

¥ Preparar diluciones decimales seriadas del alimento (10-1 a 10-4).

¥ Sembrar 1 ml de las dos últimas diluciones en placas petri vacías.

¥ Verter el Agar PCA a sobrefusión sobre las placas y homogeneizar con la muestra.

¥ Incubar a 37ºC durante 24 y 48 horas.

¥ Realizar lecturas a las 24 y 48 horas.

 

Lectura:

¥ Contar las placas cuyo número de colonias esté comprendido entre 30 y 300.

¥ Multiplicar por el factor de dilución y el volumen inoculado.

¥ Expresar el resultado en UFC/g de alimento.

 

Resultados:

 

Nº colonias

Dilución sembrada

Volumen sembrado

UFC/g

 

 

 

 

 

 

 

 

 

INVESTIGACION DE MICROORGANISMOS AEROBIOS MESOFILOS EN AGUA

Recuento por siembra en superficie.

 

Material

¥ Tubos de ensayo 16x160mm con solución salina.

¥ Pipetas estériles de 1ml.

¥ Estufa de cultivo.

¥ Placas petri con Agar PCA (Platee Count Agar).

 

Procedimiento:

Detección y Recuento

¥ Preparar diluciones decimales seriadas del alimento (10-1 a 10-4).

¥ Sembrar 0,1 ml de las dos últimas diluciones en placas petri.

¥ Extender el volumen inoculado por toda la superficie.

¥ Incubar a 37ºC durante 24 y 48 horas.

¥ Realizar lecturas a las 24 y 48 horas.

 

Lectura:

¥ Contar las placas cuyo número de colonias esté comprendido entre 30 y 300.

¥ Multiplicar por el factor de dilución y el volumen inoculado.

¥ Expresar el resultado en UFC/g de alimento.

Resultados:

 

Nº colonias

Dilución sembrada

Volumen sembrado

UFC/g

 

 

 

 

 

 

 

 

 

2.- HONGOS Y LEVADURAS

A pesar de su estudio conjunto, bajo este epígrafe se encuadran especies microbianas de muy diferentes características. Se considera como moho determinado tipo de hongo multicelular filamentoso, dotado de micelio verdadero y microscópico, mientras que las levaduras son aquellos hongos con células independientes que crecen formando agregados y que pueden presentar diferentes aspectos celulares, desde globosas hasta cilíndricas, pasando por formas alargadas u ovoides. Las levaduras, en medio sólidos generan colonias semejantes a las que se aprecian en las bacterias.

            Otra diferencia entre ambos grupos reside en su identificación. Las levaduras, al igual que las bacterias, pueden ser sometidas a diferentes pruebas bioquímicas que permiten su diferenciación. Sin embargo, los mohos raramente pueden ser clasificados de acuerdo a este criterio, siendo más habitual su clasificación de acuerdo a caracteres morfológicos observados por microscopía.

 

INVESTIGACION DE HONGOS Y LEVADURAS EN ALIMENTOS

Recuento por siembra en superficie.

 

Material

¥ Tubos de ensayo 16x160mm con solución salina.

¥ Pipetas estériles de 1ml.

¥ Estufa de cultivo.

¥ Placas petri con Agar Rosa de Bengala.

 

Procedimiento:

Detección y Recuento

¥ Preparar diluciones decimales seriadas del alimento (10-1 a 10-3).

¥ Sembrar 0,1 ml de las dos últimas diluciones en placas petri.

¥ Extender el volumen inoculado por toda la superficie.

¥ Incubar a 25ºC durante 4 días y realizar lectura.

 

Lectura:

¥ Contar las placas cuyo número de colonias esté comprendido entre 20 y 80.

¥ Multiplicar por el factor de dilución y el volumen inoculado.

¥ Expresar el resultado en UFC/g de alimento.

 

 

 

Resultados:

 

Nº colonias

Dilución sembrada

Volumen sembrado

UFC/g

 

 

 

 

 

 

 

 

 

3.- MICROBIOTA PSICROTROFA

Bajo este nombre genérico se agrupan todas aquellas especies con capacidad para crecer a temperaturas de refrigeración, comprendidas entre 4 y 20°C. De forma estricta, los microorganismos psicrotrófos presentan una temperatura óptima de desarrollo entre 10 y 20°C, aunque pueden llegar a crecer a valores inferiores a 5°C. Serían, por tanto, especies tolerantes. En oposición, existen microorganismos que no sólo toleran, sino que demandan valores térmicos en torno a 0°C para mostrar un correcto grado de crecimiento. Son los denominados psicrófilos.

 

Especies Gram negativas

Achromobacter, Pseudomonas, Flavobacterium, Hafnia, Proteus, Alcaligenes, Aeromonas, Klebsiella, Enterobacter, Escherichia, Serratia, Acinetobacter

 

Bacillus, Corynebacterium, Lactobacillus, Streptococcus, Staphylococcus, Micrococcus

Especies Gram positivas

 

 

 

            Además de las relacionadas en los anteriores cuadros, diferentes especies de reconocido carácter patógeno, tales como Yersinia enterocolitica, Listeria monocytogenes y Clostridium botulinum están capacitadas para desarrollase a bajas temperaturas.

 

INVESTIGACION DE MICROORGANISMOS PSICROTROFOS

Recuento por siembra en superficie.

 

Material

¥ Tubos de ensayo 16x160mm con solución salina.

¥ Pipetas estériles de 1ml.

¥ Estufa de cultivo.

¥ Placas petri con Agar PCA.

 

Procedimiento:

Detección y Recuento

¥ Preparar diluciones decimales seriadas del alimento (10-1 a 10-3).

¥ Sembrar 0,1 ml de las dos últimas diluciones en placas petri.

¥ Extender el volumen inoculado por toda la superficie.

¥ Incubar a 20ºC durante 5 días y realizar lectura.

 

Lectura:

¥ Contar las placas cuyo número de colonias esté comprendido entre 30 y 300.

¥ Multiplicar por el factor de dilución y el volumen inoculado.

¥ Expresar el resultado en UFC/g de alimento.

 

 

Resultados:

 

Nº colonias

Dilución sembrada

Volumen sembrado

UFC/g

 

 

 

 

 

 

 

 

 

4.- ENTEROBACTERIAS TOTALES EN ALIMENTOS

La familia Enterobacteriaceae está integrada por bacilos Gram negativos cuyas características generales se describen en la Tabla I:

Esta familia incluye 29 géneros y más de 100 especies, de las que aproximadamente 23 tienen significación desde el punto de vista higiénico y sanitario. Dichas especies pertenecen a 14 géneros que se diferencian en dos grupos según su capacidad para fermentar la lactosa (Tabla 2).

El análisis de enterobacterias se utiliza en alimentos para señalar la calidad sanitaria de alimentos procesados (pasteurizados, cocidos, alimentos infantiles, etc.). Niveles altos en estos productos indican elaboración poco higiénica, contaminación posterior a su fabricación o ambas cosas. Por tanto, una concentración de este grupo microbiano por encima de los valores de referencia siempre implica un riesgo alimentario y alerta respecto a la posible incidencia de anomalías.

En general se recomienda la numeración de Enterobacteriaceae cuando se altera el equilibrio de la microbiota de un alimento por distintas causas: propiedades intrínsecas del alimento (pH y aw bajos), conservación en condiciones desfavorables para no esporulados (refrigeración, congelación), tratamiento térmico (pasteurización), etc.

 

Tabla 1. Características generales de los miembros

 de la familia Enterobacteriaceae

 

Bacilos Gram negativos

Aerobios o anaerobios facultativos

No esporulados

Móviles o inmóviles

Fermentan la glucosa

Reducen NO3- a NO2- a

Citocromo-oxidasa negativos

Catalasa positivo b

Crecen en medios con sales biliares

a Excepto algunas especies de Erwinia y Yersinia

b Excepto Shigella dysenteriae O grupo 1 y Xenorhabdus

 

Dentro de este grupo no es necesario identificar especies concretas, puesto que todas ellas muestran similar significación. La analítica se realiza mediante cuantificación de UFC en medios adecuados en los que se detecta la característica fermentación de la lactosa. Estos medios, además, contienen sales biliares que permiten la selección de las enterobacterias frente a otros grupos microbianos presentes en el alimento, principalmente Gram positivos. Las especies que responden a esta característica, integrantes habituales de la microbiota típica de alimentos, muestran un alto grado de incapacidad para crecer en presencia de este tipo de sustancias, así como de otros compuestos, tales como el cristal violeta, que igualmente son adicionados a los medios de cultivo destinados a la investigación de enterobacterias. El medio de cultivo más utilizado para el recuento de enterobacterias en alimentos es el VRBG (agar baliado-glucosa-rojo neutro-cristal violeta).

 

INVESTIGACION DE ENTEROBACTERIAS EN ALIMENTOS

Recuento por siembra en placa.

 

Material

¥ Pipetas de 1ml estériles.

¥ Asa de cultivo.

¥ Placas Petri estériles.

¥ Medios de cultivo: Agar baliado rojo violeta glucosa (V.R.B.G.) o Agar MacConkey.

¥ Reactivo para la prueba citocromo-oxidasa.

 

Procedimiento:

Detección y recuento

¥ Realizar diluciones decimales seriadas del alimento (10-1 a 10-4).

¥ Depositar 1ml de cada dilución en placas Petri estériles.

¥ Verter 15ml de V.R.B.G. atemperado a 45-47ºC.

¥ Mezclar cuidadosamente, dejar solidificar e incubar a 37ºC durante 18-24 horas.

 

Análisis Presuntivo:

¥ Contar colonias teñidas de color rojo-violeta con halo púrpura de precipitado de sales biliares o todas las colonias, en caso de utilizar MacConkey. Estos medios permiten a la vez diferenciar entre los dos grupos principales de enterobacterias:

Æ Lactosa positivas: En este grupo se incluyen los coliformes, que estudiaremos con más detalle en la práctica siguiente.

Æ Lactosa negativa: Grupo en el que se incluye la mayoría de enterobacterias patógenas (ej. Salmonella, Shigella, Yersinia).

 

Análisis confirmativo:

Tomar colonias de distinta morfología rodeadas de halo púrpura (o de los principales tipos) y realizar la prueba de la citocromo oxidasa (ver Anexo F). Esta prueba permite discernir si las colonias crecidas son enterobacterias u otra bacteria que puede crecer en dicho medio pero no es una enterobacteria, Pseudomonas. Esta bacteria es oxidasa positiva y las enterobacterias son oxidasa negativas.

 

Resultados

Recuento: Número de enterobacterias totales. Se multiplica las colonias contadas en medio VRBG y confirmadas, por el factor de dilución en placa.

Confirmativo: Las enterobacterias son citocromo-oxidasa negativas.

 

UFC enterobacterias/g de alimento:

 

 


Tabla 2. Principales aspectos relacionados con los géneros pertenecientes a la familia Enterobacteriaceae

Lactosa

Género

Hábitats

Patogenicidad

 

No fermentan lactosa

 

Salmonella

 

Vertebrados de sangre caliente y fría

 

Gastroenteritis

Shigella

Intestino del hombre

Disentería bacilar o shigelosis

Edwarsiella

Intestino de animales sangre caliente y fría

Discutido6

Hafnia

Aguas residuales, suelo, agua, heces y alimentos

no patógeno

Proteus

U.Tracto intestinal, agua residual, suelo, animales en descomposición, alimentos

Infecciones sépticas

Providencia

 

Dudoso7

Yersinia

Agua, alimentos, animales, intestino del hombre y animales sanos

 

Morganella

Intestino hombre y animales de sangre caliente y fría

 

Erwinia 1

Agua, tracto intestinal del hombre

Patógeno oportunista

 

Fermentan lactosa

 

Escherichia

 

U. Tracto intestinal de animales de sangre caliente y hombre

 

Biotipos y serotipos producen gastroenteritis

Enterobacter

Suelo, agua, agua residual, tracto intestinal hombre y animales

Trastornos gastroentéricos

Klebsiella 2

Agua, suelo, aguas residuales, tracto respiratorio e intestinal

Gastroenteritis, alergias

Citrobacter 3

Intestino, suelo, aguas fecales y alimentos

Discutido

Serratia 4

U. Alimentos

Patógeno oportunista

U: Muy distribuido en la naturaleza

1 Fermenta excepcionalmente la lactosa

2 Excepto Kb.pneumoniae sb rhinoscleromatis

3 Fermentan la lactosa un 75 % de las cepas

4 Fermentación de lactosa variable

5 E. Torda se ha encontrado en heces normales y diarreicas

6Aislado en heces diarreicas, infecciones tracto urinario


5.- COLIFORMES

Los coliformes son bacilos gram negativos, no esporógenos pertenecientes a la familia Enterobacteriaceae que fermentan la lactosa en 48 horas (son las enterobacterias fermentadoras de la lactosa) con producción de ácido y gas en presencia de sales biliares.

En este grupo se incluyen cuatro géneros: Escherichia, Citrobacter, Enterobacter y Klebsiella, además de algunas cepas de Serratia (ver Tabla 3).

 

Tabla 3. Características del grupo coniforme

Prueba

Escherichia

Klebsiella

Enterobacter

Citrobacter

Glucosa

Gas glucosa

Lactosa

Indol

Rojo metilo

Voges-Proskauer

Citrato

Urea

Movilidad

+

+

+

+

+

-

-

-

+/-

+

+

+

d

-

+

+

+

-

+

+

+

-

-

+

+

+/-

+

+

+

d

-

+

-

+

d

+

d= dudoso

 

El hábitat natural de los coliformes es el tracto intestinal humano y animal, aunque también se pueden aislar de muestras medioambientales (tierra, polvo, aguas superficiales y vegetales). Así, su procedencia puede ser tanto fecal como no fecal. Los coliformes son resistentes a condiciones medioambientales adversas, soportan la desecación, pero no condiciones de congelación o refrigeración. Esta última característica hace que su investigación en alimentos congelados no tenga ninguna relevancia. Solamente son útiles como indicadores de la calidad en ciertos tipos de productos terminados o indicativos de la fase de conservación y almacenamiento.

En el grupo coliforme destacan por su mayor significación sanitaria los coliformes fecales, entendiendo como tales aquellos capaces de desarrollarse entre 44 y 46ºC (habitualmente 44,5º o 45,5ºC) con producción de ácido y gas a partir de lactosa.

 

INVESTIGACION DE COLIFORMES EN ALIMENTOS

Recuento por NMP

 

Material

¥ Tubos de ensayo 16x160mm.

¥ Gradillas.

¥ Pipetas estériles de 10 y 1ml.

¥ Estufa de cultivo.

¥ Tubos con 10 ml caldo lactosado baliado verde brillante (BGBL) y campana Durham.

¥ Agar EMB (eosina azul de metileno).

 

 

 

 

Procedimiento:

La detección de este grupo se fundamenta en su capacidad para fermentar la lactosa con producción de gas en presencia de sales biliares. La cuantificación se realiza mediante la técnica del número mas probable (NMP).

Detección y Recuento

¥ Preparar diluciones decimales seriadas del alimento (10-1 a 10-3).

¥ Preparar tres series de tres tubos cada una con 10ml de BGBL y campana Durham.

¥ Adicionar 1ml de cada una de las diluciones a cada uno de los tres tubos de cada serie:

Æ A tres tubos de la primera serie se adiciona 1ml de dilución 1:10.

Æ A tres tubos de la segunda serie se adiciona 1ml de dilución 1:100.

Æ A tres tubos de la tercera serie se adiciona 1ml de dilución 1:1000.

¥ Incubar a 37ºC durante 24 y 48 horas.

¥ Realizar lecturas a las 24 y 48 horas.

 

Lectura e interpretación:

Observación de la generación de gas depositado en la campana Durham (al menos en 1/10 parte de su volumen) y de la aparición de coloración amarilla en el medio de cultivo como consecuencia de la fermentación de la lactosa.

 

Confirmación:

¥ Sembrar por estría (aislamiento) con asa de platino los tubos positivos en agar EMB.

¥ Incubar a 35ºC durante 24-48 horas.

¥ La aparición de colonias con brillo verde metálico o negras confirma la presencia de coliformes.

¥ Anotar el número de tubos confirmados en cada serie y recurrir a la tabla del NMP donde se obtiene el recuento por gramo o mililitro de alimento.

 

Tabla 2. NMP

Número de tubos positivos en cada dilución

 

Dilución 10-1

Dilución 10-2

Dilución 10-3

NMP por gramo o mililitro

0

0

0

1

1

1

1

1

2

2

2

2

2

2

3

3

3

3

3

3

3

3

3

3

3

3

0

0

1

0

0

1

1

2

0

0

1

1

2

2

0

0

0

1

1

2

2

2

3

3

3

3

 

01

0

0

1

0

1

0

0

1

0

1

0

1

0

1

2

0

1

0

1

2

0

1

2

3

<3

3

3

4

7

7

11

11

9

14

15

20

21

28

23

39

64

43

70

90

150

210

200

500

1100

>2400

* Para calcular el NMP de diluciones mayores de las que figuran en la tabla, multiplicar el NMP por el factor adecuado. Ejemplo: Si los tubos seleccionados corresponden a las diluciones 10-3, 10-4 y 10-5 multiplicar por 100.

 

Detección y recuento de coliformes fecales:

¥ Tomar con pipeta 1 ml de los tubos positivos y transferir a tubos con 10ml de medio BGBL con campana Durham.

¥ Incubar a 44ºC/24h.

¥ Anotar tubos positivos (amarillos y con gas en campana).

¥ Determinar NMP de coliformes fecales.

 

Resultados:

 

 

Dilución 10-1

Dilución 10-2

Dilución 10-3

Nº tubos positivos

(coliformes)

 

 

 

Nº tubos confirmados

(coliformes)

 

 

 

Nº tubos positivos

(coliformes fecales)

 

 

 

 

NMP coliformes/g:

NMP coliformes fecales/g:

 

INVESTIGACION DE COLIFORMES EN AGUA

Recuento por filtración

 

Material

¥ Sistema de filtración.

¥ Filtros de 0,45 µm.

¥ Pinzas

¥ Placas petri con Agar EMB (eosina azul de metileno).

 

 

 

 

Procedimiento:

La detección de este grupo se fundamenta en su capacidad para fermentar la lactosa en presencia de sales biliares. La cuantificación se realiza mediante la técnica del número mas probable (NMP).

 

Detección y Recuento

¥ Filtrar 100 ml de muestra sobre un filtro de 0,45 µm en un ambiente aséptico.

¥.Retirar el filtro con unas pinzas y depositarlo sobre una placa con Agar EMB.

¥ Incubar a 37ºC durante 24 y 48 horas.

¥ Realizar lecturas a las 24 y 48 horas.

 

Lectura e interpretación:

Observación de las colonias aparecidas sobre el filtro. Todas aquellas de tonalidad azul oscura  con brillo verde metálico son consideradas fermentadoras de lactosa y, por tanto, coliformes.

 

Resultados

Recuento: Número de coliformes. Se divide el número de colonias obtenidas por el volumen analizado.

 

UFC coliformes/ml:

 

 

6.- DETECCION DE Salmonella EN ALIMENTOS

El género Salmonella pertenece a la familia Enterobacteriaceae e incluye varias especies patógenas para el hombre y los animales. Son bacilos Gram negativos anaerobios facultativos, móviles por flagelos peritricos.

En el hombre causan dos cuadros clínicos: fiebre tifoidea y gastroenteritis. Esta última es considerada como una intoxicación alimentaria y se manifiesta tras 12-36 horas de ingerir el alimento con vómitos, náuseas, dolores abdominales, fiebre y diarrea que persisten durante 1 a 7. El reservorio son las personas portadoras (infectadas) y animales enfermos (aves principalmente). La transmisión se realiza a través de los alimentos, destacando la carne y productos cárnicos (carnes picadas, salchichas), la leche y los huevos (cremas, pasteles, helados). La refrigeración de los alimentos y una correcta manipulación y cocción limitan la contaminación.

Cuando un alimento está contaminado con salmonelas suele contener también gran cantidad de enterobacterias muy similares. Por ello es necesario realizar un enriquecimiento de la muestra en medios selectivos que propician el crecimiento de Salmonella frente a otras bacterias presentes. Por otra parte, como se suele exigir la ausencia de este microorganismo en el alimento, la analítica debe ir enfocada a demostrar que efectivamente no se encuentra en el alimento.

 

INVESTIGACION DE Salmonella EN ALIMENTOS

 

Material

¥ Pipetas de 1ml estériles.

¥ Asa de cultivo.

¥ Placas Petri estériles.

¥ Medios de cultivo:

Æ Medio de PRE enriquecimiento: Caldo nutritivo.

Æ Medio de enriquecimiento: Caldo selenito-cistina.

Æ Medio para detección: Agar Hektoen.

¥ Reactivo para la prueba citocromo-oxidasa.

 

Procedimiento:

¥ Toma de muestras y homogeneización: Tomar 25 g de alimento, mezclar con 225ml de caldo nutritivo y homogeneizar (si el alimento es ácido debe ajustarse el pH a 6-7).

¥ PRE enriquecimiento: Incubar el homogeneizado 16-20h a 37ºC.

¥ Enriquecimiento: Inocular 1ml del cultivo de PRE enriquecimiento en un tubo con 10 ml de caldo selenito-cistina. Incubar durante 24-48h.

¥ Detección: A partir del tubo de enriquecimiento inocular placas con agar Hektoen (técnica de aislamiento). Incubar las placas 48 h a 37ºC.

 

Lectura:

Las colonias de Salmonella en agar Hektoen aparecen verde azuladas con o sin centro negro.

 

Análisis confirmativo (opcional): Se realizará una u otra prueba.

¥ Tomar colonias sospechosas e inocularlas en sistema API 20.

¥ Tomar colonias y realizar la prueba de Kligler.

 

Resultados

Se expresan como presencia o ausencia en 25 g de alimento.

 

7.- DETECCION DE Staphylococcus EN PORTADORES SANOS

Staphylococcus aureus es un microorganismo de forma cocácea que se agrupa en adoptando una disposición de racimos irregulares. Son anaerobios facultativos, aunque crecen mejor en aerobiosis. Muestran un buen desarrollo a concentraciones de NaCl superiores al 10%, característica que se aprovecha para su aislamiento.

S. aureus produce intoxicación alimentaria de carácter toxigénico. Estos microorganismos producen enterotoxinas que actúan a nivel del tubo digestivo produciendo náuseas, vómitos y diarreas. Estos síntomas aparecen a las pocas horas de ingerido el alimento contaminado.

La principal fuente de contaminación de los alimentos se encuentra en los manipuladores. Este microorganismo se localiza en la nariz, piel, pelo o en lesiones. El 50% de las personas sanas albergan S. aureus en su nasofaringe y al menos un 20% pueden producir toxinas. Estas personas contaminan el alimento mediante secreciones nasales, saliva, escoriaciones, partículas de heridas infectadas o al tocar con la mano contaminada el alimento. Los principales alimentos implicados en la intoxicación estafilocócica son leche, carne y productos cárnicos, pescados, huevos, pasteles y ensaladillas.

 

 

 

 

INVESTIGACION DE Staphylococcus EN PORTADORES SANOS

En esta práctica se pondrá de manifiesto la presencia de S. aureus en portadores sanos.

 

Material

¥ Torunda de algodón.

¥ Asa de cultivo.

¥ Placas con medio de Chapman (manitol, 7,5% NaCl, rojo fenol).

 

Procedimiento:

¥ Tomar en condiciones asépticas muestra de la fosa nasal del posible portador.

¥ Realizar un aislamiento en placa con medio de Chapman.

 

Lectura:

S. aureus forma colonias de color amarillento en el medio de Chapman.

 

Análisis confirmativo:

Tomar colonias sospechosas y realizar prueba de la DNAsa.

 

Resultados

Se expresan como presencia o ausencia de S. aureus DNAsa positivos.

 

 8.- LA LEVADURA COMO AGENTE ESPONJANTE DE LA MASA PANARIA

Una amplia mayoría de los productos de panadería se obtienen como consecuencia de los procesos fermentativos que llevan a cabo diferentes bacterias ácido lácticas (Lactobacillus plantarum, Lb. brevis y Lb. fermenti)y, principalmente, levaduras. Ambos grupos microbianos proceden de la microbiota típica que se puede encontrar en los cereales, materia prima básica de estos productos, y que muestran capacidad para persistir durante el proceso de panificación. Las primeras fermentan los azúcares liberados durante la hidrólisis del almidón, generando ácido láctico, ácido acético, etanol y CO2, en proporciones dependientes del tipo de especie predominante. Las levaduras fermentan igualmente los azúcares hasta formar etanol y CO2. Los ácidos son responsables del sabor, mientras que el gas producido dota la masa de la porosidad y ligereza adecuadas.

            Las levaduras pueden llegar a generar hasta 350 ml de CO2 por cada 100 g de masa, hasta un 60% más del volumen que se consigue con las levaduras sintéticas, en las que el bicarbonato sódico supone una parte importante. La especie predominante es Saccharomyces cerevisiae, pero no resulta infrecuente la participación de otras especies del género. El proceso de producción de la masa panaria se lleva a cabo e diferentes etapas, en cada una de las cuales tiene lugar el crecimiento microbiano sobre una mezcla adecuada de agua y harina. En la fase inicial de cada una de las etapas se desarrollan preferentemente las levaduras, modificando la porosidad de la masa, y posteriormente crecen los lactobacilos, que influyen de forma mayoritaria sobre la concentración de ácidos. Durante el proceso se observa un incremento de la temperatura de 22-24°C hasta 28-30°C.

            La masa obtenida se moldea en la forma adecuada y se cuece. Las condiciones de temperatura y tiempo aplicadas dependen del tipo de pan y de su peso. No obstante, la zona externa siempre alcanza valores térmicos superiores, hasta el punto de que se produce la caramelización de algunos azúcares, lo que favorece la formación de la corteza. El resto de la masa experimenta pérdida de agua y formación de compuestos que contribuyen al aroma y sabor definitivos del pan. Las proteínas presentes se coagulan, proporcionando una mayor consistencia a la masa y, en general, se incrementa la digestibilidad del producto.

 

ACCIÓN ESPONJANTE DE LAS LEVADURAS DE PANADERÍA

A partir de una mezcla adecuada de harina y agua, con adición o no externa de azúcares suplementarios, y mediante inoculación con una suspensión de levadura, es posible determinar cuantitativamente la esponjosidad de la masa panaria mediante el incremento que experimenta el volumen de dicha masa.

 

Material

¥ Vasos de precipitado de 250 ml (4).

¥ Matras Erlenmeyer de 250 ml.

¥ Pipeta de 10 ml.

¥ Harina de trigo.

¥ Glucosa.

¥ Balanza.

¥ Estufa.

 

 

 

Procedimiento:

¥ Numerar los vasos de precipitado del 1 al 4.

¥ Añadir a cada uno 25 g de harina de trigo.

¥ Añadir 3 g de glucosa a los vasos 1, 2 y 3.

¥ Añadir 22,5 ml de agua al vaso 1 y 15 ml al 2.

¥ Preparar la suspensión de levadura por adición de 10 g en 120 ml de agua templada.

¥ Añadir 7,5 ml de la suspensión al vaso 1, 15 ml al vaso 2, y 30 ml a los vasos 3 y 4 y mezclar adecuadamente.

¥ Incubar a 30°C durante 90 minutos e ir observando el incremento de volumen.

 

9.- ELABORACIÓN DE ALIMENTOS POR FERMENTACIÓN ACIDOLÁCTICA: YOGUR.

La obtención de alimentos derivados de los procesos de acidificación realizados por determinados grupos bacterianos es una práctica habitual desde tiempos inmemoriales. Generalmente, estos productos están destinados al consumo humano (derivados lácteos, col fermentada), aunque existen algunas excepciones tales como la producción de alimentos destinados al ganado.

            Los microorganismos con capacidad para realizar este tipo de transformaciones se conocen genéricamente como bacterias lácticas. Este tipo bacteriano está constituido un grupo homogéneo de especies Gram positivas con metabolismo anaerobio, aunque aerotolerantes, que fermentan los sustratos carbonados, fundamentalmente azúcares, con formación de ácido láctico y que, por sus características, suelen encontrarse en la leche, en plantas y en la mucosa intestinal de animales y seres humanos.

            Pero a pesar de su notable homogeneidad, existen diferencias entre las distintas especies lácticas que permiten establecer dos grandes grupos en función a la existencia de otros productos finales, además del ácido láctico, como consecuencia de su actividad metabólica. Así, se habla de bacterias homo fermentativas en referencia a aquellas bacterias que originan únicamente este ácido como consecuencia de la fermentación  (concentraciones superiores al 90%) o hetero fermentativas en relación a las especies en las que se obtiene una mezcla de ácido láctico, ácido acético, etanol y dióxido de carbono, no superando el primero de ellos el 50% del total.

            La elaboración de derivados lácteos supone un importante porcentaje del global de la industria alimenticia, dando lugar a la producción de nata, mantequilla, leche cuajada o yogur. Este último producto procede originariamente de Los Balcanes, lugar en el que inicialmente se preparaba a partir de leche de oveja o cabra, aunque actualmente se obtiene de forma mayoritaria utilizando leche de vaca. La leche es sometida a un proceso de pasteurización a 858C, tras el cual, y previo enfriamiento hasta 50°C, es inoculada con un cultivo mixto de Lactobacillus bulgaricus (proporciona el aroma) y Streptococcus termophilus (confiere al yogur su sabor fresco y ácido). Ambas bacterias presentan sus máximos niveles de actividad a 40°C, inhibiéndose su desarrollo a valores inferiores  a 15°C. La leche inoculada es transferida a los envases de comercialización e incubada a 40°C durante 9-12 horas, tiempo en el que se coagula y se alcanza un contenido en ácido láctico entre el 1 y el 1,5%. Inmediatamente después se enfría y se mantiene en estas condiciones de temperatura hasta su consumo, evitando así una excesiva acidificación.

 

 

 

Desarrollo Práctico

 

Material

¥ Leche fresca entera

¥ Yogur

¥ Vaso de precipitado

¥ Placa Petri

¥ Varilla de vidrio

 

Procedimiento

¥ Pasteurizar la leche fresca a 85°C durante 5 minutos.

¥ Dejar enfriar hasta 50 °C.

¥ Inocular con una pequeña cucharada de yogur y mezclar bien con la varilla de vidrio.

¥ Tapar con la placa de Petri e incubar a 40°C durante 9-12 horas.

¥ Enfriar en refrigerador y conservar.

¥ Realizar una tinción de Gram a partir del yogur elaborado o del comercial.

 

 

 


Temporalización

 

 

Sesión 1

Sesión 2

Sesión 3

Sesión 4

Sesión 5

Sesión 6

Introducción

Introducción al laboratorio de Microbiología

 

 

 

 

 

 

 

Preparación de muestras

 

 

 

 

Microbiota mesófila aerobia

 

Siembra (AL y AG)

Lectura

Tinciones

Tinciones

 

Hongos y levaduras

 

Siembra

 

 

 

Lectura

Microorganismos psicrótrofos

 

Siembra

 

 

 

Lectura

Enterobacterias

 

Siembra

Lectura enterobacterias

Prueba confirmativa

 

 

 

Coliformes

 

Siembra (AL y AG)

Lectura coliformes

Confirmativa coliformes

Lectura confirmativa

Siembra C. fecales

Lectura C. fecales

 

Salmonella

 

PRE enriquecimiento

Enriquecimiento

Siembra Hektoen

Lectura

Prueba confirmativa

Lectura Kligler

S. aureus

 

 

Siembra (Chapman)

Lectura

Siembra en agar-DNAsa

Lectura DNAsa

 

Obtención de yogurt

 

 

 

Realización completa

 

 

Masa panaria

 

 

 

 

Realización completa

 

 

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